ЛУБʼЯНІ та ТЕХНІЧНІ КУЛЬТУРИ
збірник наукових праць
DOI: 10.48096/btc.2019.7(12).15-23
Модифікація живильного середовища для культивування непсихотропних конопель (Cannabis Sativa L.) середньоєвропейського еколого-географічного типу in vitro
Міщенко С.В., кандидат сільськогосподарських наук, старший науковий співробітник
ІНСТИТУТ РОСЛИННИЦТВА ім. В. Я. ЮР’ЄВА НААН
Анотація
Для підвищення ефективності культивування однодомних непсихотропних конопель (Cannabis sativa L.) середньоєвропейського еколого-географічного типу в умовах in vitro запропоновано живильне середовище Мурасіге і Скуга, яке включає 440 мг/л (3 мМ) CaCl2 · 2Н2О, 370 мг/л (1,5 мМ) MgSO4 · 7H2O, 22,3 мг/л (100 мкМ) MnSO4 · 4H2O, 8,6 мг/л (30 мкМ) ZnSO4 · 4H2O, 0,83 мг/л (5 мкМ) КJ, 0,25 мг/л (1 мкМ) Na2МоО4 · 2H2O, 2 мг/л гліцину, 100 мг/л мезо-інозиту, 0,5 мг/л піридоксину, 0,1 мг/л тіаміну, а також NH4NO3, KNO3, KH2PO4, FeSO4 · 7Н2О, комплексований (хелатований) EDTA‑Na2, Н3ВО3, CuSO4 · 5H2O, CoCl2 · 6H2O, нікотинову кислоту, сахарозу, агар, фітогормони за потреби, модифікувати наступним чином: 2400 мг/л (30 мМ) NH4NO3, 1768 мг/л (17,5 мМ) KNO3, 136 мг/л (1 мМ) KH2PO4, 34,72 мг/л (125 мкМ) FeSO4 · 7Н2О, комплексованого (хелатованого) EDTA-Na2, 12,36 мг/л (200 мкМ) Н3ВО3, комплексованої (хелатованої) С3Н5(ОН)3, 0,05 мг/л (0,2 мкМ) CuSO4 · 5Н2О, 0,05 мг/л (0,2 мкМ) CoCl2 · 6Н2О, 5 мг/л аскорбінової кислоти, 1 г/л активованого вугілля, 10–30 г/л глюкози, 8 г/л агару.
Ключові слова:
коноплі, живильне середовище, макроелементи, мікроелементи, фітогормони, in vitro.
Мова:
Ukrainian
Повний текст:
References:
Живильне середовище для культивування однодомних ненаркотичних конопель (Cannabis sativa L.) середньоросійського еколого-географічного типу в умовах in vitro: пат. 139471 UA. № u 2019 06014; заявл. 31.05.2019; опубл. 10.01.2020, Бюл. № 1.
Злобін Ю. А. Курс фізіології і біохімії рослин: підручник. Суми, 2004. 464 с.
Міщенко С. В. Індукція калусогенезу в технічних (промислових) конопель в умовах in vitro. Луб’яні та технічні культури. 2018. Вип. 6 (11). С. 21–28.
Міщенко С. В. Ефективність розмноження Cannabis sativa L. з насіння з низькою схожістю та життєздатністю в умовах in vitro. Таврійський науковий вісник. 2018. Вип. 100. Т. 2. С. 3–8.
Chaohua C., Gonggu Z., Lining Z. et al. A rapid shoot regeneration protocol from the cotyledons of hemp (Cannabis sativa L.). Industrial Crops and Products. 2016. Vol. 83. P. 61–65. DOI: 10.1016/j.indcrop.2015.12.035
Grulichova M., Mendel P., Lalge A. B. et al. Effect of different phytohormones on growth and development of micropropagated Cannabis sativa L. MendelNet 2017: Proceedings of 24th International PhD Students Conference (November 8 and 9, 2017). Brno, 2017. P. 618–623.
Lata H., Chandra S., Khan I. et al. Thidiazuron-induced high-frequency direct shoot organogenesis of Cannabis sativa L. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant. 2009. Vol. 45, Iss. 1. P. 12–19. DOI: 10.1007/s11627-008-9167-5
Lata H., Chandra S., Techen N. et al. In vitro mass propagation of Cannabis sativa L.: A protocol refinement using novel aromatic cytokinin meta-topolin and the assessment of eco-physiological, biochemical and genetic fidelity of micropropagated plants. Journal of Applied Research on Medicinal and Aromatic Plants. 2016. Vol. 3, Iss. 1. P. 18–26. DOI: 10.1016/j.jarmap.2015.12.001
Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum. 1962. Vol. 15, Iss. 3. P. 473–497. DOI: 10.1111/j.1399‑3054.1962.tb08052.x
Ślusarkiewicz-Jarzina A., Ponitka A., Kaczmarek Z. Influence of cultivar, explant source and plant growth regulator on callus induction and plant regeneration of Cannabis sativa L. Acta Biologica Cracoviensia. Series Botanica. 2005. Vol. 47, Iss. 2. P. 145–151.
Smýkalová I., Vrbová M., Cvečková M. et al. The effects of novel synthetic cytokinin derivatives and endogenous cytokinins on the in vitro growth responses of hemp (Cannabis sativa L.) explants. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2019. Vol. 139. P. 381–394. DOI: 10.1007/s11240-019-01693-58.
Thacker X., Thomas K., Fuller M. et al. Determination of optimal hormone and mineral salts levels in tissue culture media for callus induction and growth of industrial hemp (Cannabis sativa L.). Agricultural Sciences. 2018. Vol. 09, Iss. 10. P. 1250–1268. DOI: 10.4236/as.2018.910088
Wielgus K., Luwanska A., Lassocinski W. et al. Estimation of Cannabis sativa L. tissue culture conditions essential for callus induction and plant regeneration. Journal of Natural Fibers. 2008. Vol. 5, Iss. 3. P. 199–207. DOI: 10.1080/15440470801976045
Wróbel T., Dreger M., Wielgus K. et al. The application of plant in vitro cultures in cannabinoid production. Biotechnology Lettes. 2018. Vol. 40, Iss. 3. P. 445–454. DOI: 10.1007/s10529-017-2492-1
Zwenger S. R. The biotechnology of Cannabis sativa: monograph. New York, 2014. 249 p.
Бібліографічний опис для цитування:
Міщенко С.В. (2019) Модифікація живильного середовища для культивування непсихотропних конопель (Cannabis Sativa L.) середньоєвропейського еколого-географічного типу in vitro. Луб’яні та технічні культури. Вип. 7. С. 15-23. DOI: 10.48096/btc.2019.7(12).15-23